组织里有不少小圆细胞,想知道主要是T细胞还是B细胞,先看哪些指标?研究肿瘤周围的巨噬细胞,CD68和CD163又该怎样搭配?这些问题很常见,也往往决定了第一轮抗体该怎么选。CD3、CD8、CD20、CD68、CD163经常出现在同一份实验清单中,但各自提供的信息不同。有的用于观察细胞类型,有的补充某类细胞的表达特征;把用途分清楚,才容易理解为什么要增加下一项检测。
这次从常用的T细胞、B细胞和巨噬细胞标志物讲起,结合几项已有研究与艾博立官网产品资料,整理一份便于查阅的基础应用指南。

图1|三类细胞与五项常用指标的用途示意,不代表经联合验证的诊断组合。
一、
先分T细胞与B细胞:CD3、CD8、CD20各看什么
CD3与T细胞受体复合体相关,是组织中观察T细胞分布的常用指标。对一块肿瘤组织而言,CD3染色可以帮助我们了解T细胞出现在哪些区域,是散在病变之间,还是更多聚集在周围间质。它适合回答“T细胞分布怎样”这一层问题。
CD8则常被用于补充CD8相关T细胞亚群的信息。因此,CD3与CD8一起安排时,两项检测并非重复:CD3提供较广的T细胞相关观察,CD8进一步提示其中需要关注的表型。单看CD8阳性细胞数量,还不能说明这些细胞已经处于有效杀伤状态。
这里也要分清“同一组织都检测到”与“同一细胞共表达”。两张相邻切片分别出现CD3和CD8阳性,可以比较区域分布;若研究结论要写成CD3、CD8双阳性细胞,就需要能够支持同细胞判断的共定位方法。连续切片可能存在细胞对应差异,不能直接把两张图的阳性数量相加或相减。
CD20对应另一条常用观察路径。它是B细胞表面相关分子,常用于识别成熟B细胞。与CD3分别染色后,可以更容易看出组织中T、B细胞的分布差别。CD20也有分化阶段限制:B细胞向浆细胞终末分化时会失去CD20表达,因此CD20不能覆盖全部B细胞分化阶段。[1]

图2|T、B细胞相关观察的概念示意,不表示真实细胞比例或共定位验证结果。
实际看图时,CD20阳性细胞是少量散在,还是形成相对集中的区域,值得保留下来。若只记录“有无阳性”,这部分组织结构信息就被省略了。至于是否形成特定的淋巴样结构,还需结合形态与其他结构证据,不能只凭一片CD20阳性区域命名。
CD68是巨噬细胞研究中常见的指标,与溶酶体及内体相关。组织切片中常见胞质颗粒样信号,因此观察时既要看着色,也要留意细胞轮廓、位置及与周围细胞的区别。把整个棕色区域当作一种细胞,容易把相邻细胞和背景一起计入。
CD68也并非只在巨噬细胞表达。Gottfried等比较原代细胞及肿瘤细胞系,使用免疫组化、流式、蛋白和RNA检测,发现部分非髓系细胞同样可表达CD68,染色表现还受克隆与固定方式影响。[2]这解释了为什么在复杂组织里,CD68应与形态及其他证据一起阅读。
CD163可以补充单核/巨噬细胞相关信息。Lau等在正常组织以及211例造血系统病变、115例非造血肿瘤中比较CD163与CD68,发现CD163在该研究的鉴别范围内具有更受限的表达分布,但也未覆盖所有相关病变。[3]这个结论有特定样本与抗体背景,不能简单写成“CD163全面优于CD68”。
另一个常见混淆,是把CD163阳性直接写成M2型巨噬细胞。CD163常被纳入M2样相关研究,但单项表达不足以完成一种功能状态的判定。Xue等在多种刺激条件下获得299份人巨噬细胞转录组,观察到超出简单M1/M2二分法的活化状态谱。[4]它提示我们,细胞身份、蛋白表达和功能状态需要分层描述。

图3|CD68与CD163的用途及功能判读边界,依据文献[2]—[4]整理。
因此,用CD68与CD163观察分布和表达是合理的研究起点;如果课题要回答免疫抑制、炎症反应或吞噬能力等功能问题,就应加入对应的功能实验或其他状态指标。报告中可以写清“哪些区域检测到CD68或CD163表达”,再由功能实验回答这些细胞在做什么。
选择指标之后,观察区域会直接影响结果。病变内部、周边间质和浸润边缘的细胞密度,可能呈现不同面貌。两组样本即使都有不少阳性细胞,若一组主要集中在周边,另一组进入病变内部,单独报一个总数也无法体现这层差别。
一个经典例子是结肠癌共识Immunoscore验证研究。Pagès等最终纳入2,681例Ⅰ—Ⅲ期结肠癌,分别量化肿瘤内部与浸润边缘的CD3、CD8阳性细胞密度,再按既定方法形成评分。它研究的是明确区域、标准化量化与特定评分体系,而非简单判断两项染色是否阳性。[5]

图4|散在、聚集及病变区域的任意布局示意;不是病例数据。
对普通科研观察,可以借鉴其中的区域意识:在计数前明确观察区,记录所分析的组织面积,并保留代表图像。若报告细胞密度,就使用一致的面积单位;若报告阳性比例,就说明分母是哪类细胞。这两种结果表达不同,不能直接混用。
这项研究说明,把细胞类型与组织位置放在一起观察,可以保留更多信息。不过,结肠癌共识Immunoscore有明确的适用人群与检测流程,其他肿瘤或不同检测方案不能直接沿用它的评分与预后解释。
如果只是初步了解T细胞、B细胞及巨噬细胞相关分布,可以围绕CD3、CD20、CD68分别安排观察;需要进一步关注CD8相关表型或CD163表达时,再补充相应检测。每增加一项,都应能说清它让我们多看到什么信息。
组织IHC、细胞染色和流式分析各有自己的制样与判读方式。某货号标注了IHC,不能据此推定它也适合流式;同样,单标染色可用,并不表示已经完成多重染色验证。若要做同细胞共定位,还要考虑抗体宿主、检测系统及顺序对结果的影响。
预实验保留三个重点就够了:选与目的相符的材料和对照,在该货号建议范围内比较少量稀释梯度,并同时查看定位、目标信号与背景。确定条件后,记录样本制备、抗原修复、孵育和检测方法,后续比较沿用同一套设置。
下列五款产品围绕本篇涉及的靶点整理,分别列出官网反应种属、应用和IHC推荐条件。单克隆产品同时列出公开克隆号;多克隆产品不填写单一克隆号。产品页与说明书链接均可直接打开。
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| CD3 | CD3 Rabbit mAb克隆:AA0212R种属:Human、Mouse、Rat应用:WB、IHC、IF、ELISAIHC:1:100—1:800 |
| CD8 α | CD8 α Rabbit mAb克隆:AA0117R种属:Human、Mouse、Rat应用:WB、IHC、IF、ELISAIHC:1:200—800(官网原文) |
| CD20 | CD20 Rabbit mAb克隆:未公开种属:Human应用:WB、IHC、FCIHC:1:50—1:200 |
| CD68 | CD68 Rabbit pAb克隆:不适用(多克隆)种属:Human、Mouse应用:WB、IHC、IF/ICCIHC:1:50—1:200 |
| CD163 | CD163 Rabbit mAb克隆:AA0856R种属:Human、Mouse、Rat应用:WB、IHC、IF、ELISAIHC:1:100—1:800 |
核验日期:2026-10-23。应用保留官网IHC标注,五款均未单列IHC-P;产品名称与货号可点击查看原页。种属与应用分别照录,不表示所有组合均已实测。
资料差异:AAY1590推荐栏及说明书写作“IHC: 1:200-800”,部分历史图例使用1:100;两者未合并为新推荐范围,具体条件需向技术支持核对。AYP11387说明书另有“预测反应”字段,本表仅照录“反应”字段。
选人来源样本时,可以进一步查看对应IHC材料;涉及小鼠或大鼠时,则按具体货号筛选。例如,本表CD20产品AYM28605标注Human,CD68产品AYP11387标注Human、Mouse,不能将其他几款的Rat标注套用过来。
AYM28605官网提供人扁桃体石蜡切片IHC示例,下图保留原图外观,仅作等比例缩放。它展示的是公司公开的应用材料,不能代替其他组织或疾病场景的验证。

图5|AYM28605官网人扁桃体石蜡切片IHC示例。原图仅等比例缩放,公开图注未列本图稀释度。
需要核对具体样本时,可向艾博立技术支持提供货号、反应种属、制样方式和实验用途,索取相应说明书与批次应用资料。
[1] Zuccolo J, Deng L, Unruh TL, et al. Expression of MS4A and TMEM176 Genes in Human B Lymphocytes. Frontiers in Immunology. 2013;4:195. 发表:2013-07-15。DOI: 10.3389/fimmu.2013.00195;PMID: 23874341。本文用于CD20表达背景。
[2] Gottfried E, Kunz-Schughart LA, Weber A, et al. Expression of CD68 in non-myeloid cell types. Scandinavian Journal of Immunology. 2008;67:453–463. 期刊出版:2008-05。DOI: 10.1111/j.1365-3083.2008.02091.x;PMID: 18405323。本篇依据公开摘要介绍。
[3] Lau SK, Chu PG, Weiss LM. CD163: a specific marker of macrophages in paraffin-embedded tissue samples. American Journal of Clinical Pathology. 2004;122:794–801. 期刊出版:2004-11。DOI: 10.1309/QHD6-YFN8-1KQX-UUH6;PMID: 15491976。本篇依据公开摘要介绍。
[4] Xue J, Schmidt SV, Sander J, et al. Transcriptome-based network analysis reveals a spectrum model of human macrophage activation. Immunity. 2014;40:274–288. 首次在线:2014-02-13。DOI: 10.1016/j.immuni.2014.01.006;PMID: 24530056。本篇依据公开摘要介绍。
[5] Pagès F, Mlecnik B, Marliot F, et al. International validation of the consensus Immunoscore for the classification of colon cancer: a prognostic and accuracy study. The Lancet. 2018;391:2128–2139. 首次在线:2018-05-10。DOI: 10.1016/S0140-6736(18)30789-X;PMID: 29754777。本篇依据公开摘要介绍。
产品资料来源:表中五款官方产品页与说明书,链接见货号及说明书入口。本篇用于科研交流与选型参考;所引研究未证明使用了上述艾博立产品,不将文献结果作为本公司抗体性能。
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